PAS staining is mainly used for staining structures containing a high proportion of carbohydrate macromolecules (glycogen, glicoproteína, proteoglicanos), que se encuentran típicamente en, por ejemplo, tejidos conectivos, moco, glicocalix y láminas basales.
La tinción PAS se puede utilizar para ayudar en el diagnóstico de varias afecciones médicas:
- Enfermedad de almacenamiento de glucógeno (en comparación con otros trastornos de almacenamiento).
- Adenocarcinomas, que a menudo secretan mucinas neutras.
- Enfermedad de Paget de la mama.
- Sarcoma de parte blanda alveolar. Tinción de macrófagos en la enfermedad de Whipple.
- Se puede utilizar para diagnosticar la deficiencia de α1-antitripsina si los hepatocitos periportales del hígado son positivos.
- Los agregados de linfocitos PAS positivos están presentes en la epidermis en la Micosis fungoide y el síndrome de Sezary, llamados microabscesos de Pautrier.
- Sarcoma de Ewing
- Eritroleucemia, una leucemia de glóbulos rojos inmaduros. Estas células tiñen un fucsia brillante.
- Proteinosis alveolar pulmonar.
- Infección por hongos, las paredes celulares de los hongos tiñen de magenta; esto solo funciona en hongos vivos. Por el contrario, la tinción de plata con metenamina (GMS) de Grocott teñirá organismos fúngicos vivos y muertos.
- Se utiliza para identificar glucógeno en muestras de biopsia pulmonar de bebés con glucogenosis intersticial pulmonar (CERDO).
- Se puede usar para resaltar inclusiones de lípidos súper reticulados en la lipofuscinosis ceroide (NCL).
La presencia de glucógeno se puede confirmar en una sección de tejido usando diastasa para digerir el glucógeno de una sección, luego comparando una sección de PAS digerida por diastasa con una sección de PAS normal. La lámina de diastasa negativa mostrará una tinción magenta donde el glucógeno está presente dentro de una sección de tejido. El portaobjetos que se ha tratado con diastasa carecerá de tinción PAS positiva en los lugares del portaobjetos
La tinción PAS también se utiliza para teñir celulosa. Un ejemplo sería buscar dispositivos médicos implantados compuestos de celulosa no oxidada.
Si la tinción PAS se realiza en tejido, el fijador recomendado es formalina neutra tamponada al 10% o solución de Bouin. Para frotis de sangre, el fijador recomendado es metanol. No se recomienda el glutaraldehído porque puede haber grupos aldehídos libres disponibles para reaccionar con el reactivo de Schiff, lo que puede dar lugar a tinciones falsas positivas.