Periodic acid–Schiff stain

Gastric signet ring cell carcinoma histopathology, PAS stain

Esophageal candidiasis, PAS stain

Liver in glycogen storage disease, PAS stain

PAS staining is mainly used for staining structures containing a high proportion of carbohydrate macromolecules (glycogen, glycoprotéine, protéoglycanes), généralement présents dans les tissus conjonctifs, le mucus, le glycocalyx et les lamines basales, par exemple.

La coloration au PAS peut être utilisée pour aider au diagnostic de plusieurs conditions médicales:

  • Maladie du stockage du glycogène (par rapport à d’autres troubles du stockage).
  • Adénocarcinomes, qui sécrètent souvent des mucines neutres.
  • Maladie de Paget du sein.
  • Sarcome alvéolaire de la partie molle.
  • Coloration des macrophages dans la maladie de Whipple.
  • Il peut être utilisé pour diagnostiquer un déficit en α1-antitrypsine si les hépatocytes périportaux du foie sont positifs.
  • Des agrégats de lymphocytes PAS positifs sont présents dans l’épiderme dans les mycoses fongoïdes et le syndrome de Sézary, appelés microabcès de Pautrier.
  • Sarcome d’Ewing
  • Érythroleucémie, une leucémie de globules rouges immatures. Ces cellules tachent un fuchsia brillant.
  • Protéinose alvéolaire pulmonaire.
  • Infection fongique, les parois cellulaires des champignons tachent le magenta; cela ne fonctionne que sur les champignons vivants. En revanche, la teinture d’argent à la méthénamine (GMS) de Grocott tachera les organismes fongiques vivants et morts.
  • Il est utilisé pour identifier le glycogène dans les échantillons de biopsie pulmonaire de nourrissons atteints de glycogénose interstitielle pulmonaire (PORC).
  • Il peut être utilisé pour mettre en évidence les inclusions de lipides super réticulés dans la lipofuscinose céroïde (NCL).

La présence de glycogène peut être confirmée sur une section de tissu en utilisant la diastase pour digérer le glycogène d’une section, puis en comparant une section PAS digérée par la diastase avec une section PAS normale. La diapositive négative de diastase montrera une coloration magenta où le glycogène est présent dans une section de tissu. La lame qui a été traitée avec de la diastase n’aura pas de coloration positive au PAS à ces endroits sur la lame

La coloration au PAS est également utilisée pour la coloration de la cellulose. Un exemple serait la recherche de dispositifs médicaux implantés composés de cellulose non oxydée.

Si la tache de PAS est effectuée sur un tissu, le fixateur recommandé est une solution de formol ou de Bouin tamponnée neutre à 10%. Pour les frottis sanguins, le fixateur recommandé est le méthanol. Le glutaraldéhyde n’est pas recommandé car des groupes aldéhydes libres peuvent réagir avec le réactif de Schiff, ce qui peut entraîner une coloration faussement positive.

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